Comportamentul post-recoltare al agrișei (Physalis peruviana l
COMPORTAMENTUL POST-RECOLTAT AL FRUCTELOR UCHUVA ( Physalis peruviana L.): EFECTUL DIFERITELOR DOZE ȘI TIMPURI DE EXPUNERE LA CICLOPROPEN 1-METILIC
Comportamentul post-recoltare al fructelor uchuva (Physalis peruviana L.): Efectul diferitelor doze
și timpii de expunere la 1-metilciclopropen
Helber E. Balaguera-López [1], 2, Claudia A. Martínez-Cárdenas 3 și Aníbal Herrera-Arévalo 1
1 Facultatea de Științe Agricole, Universitatea Națională din Columbia, Campusul Universitar. Bogota Columbia. e-mail: [email protected], [email protected]
2 Grupul de cercetare agricolă. Facultatea de Științe Agricole, Universitatea Pedagogică și Tehnologică din Columbia. Campusul Universității Tunja, Columbia
3 Școala de științe agricole și zootehnice și a mediului, Universitate deschisă și la distanță, Campus universitar. Bogota e-mail: [email protected]
Cuvinte cheie suplimentare: Inhibitor al acțiunii etilenei, fructelor perisabile, maturării, producției de etilenă
Cuvinte cheie suplimentare: Producția de etilenă, inhibitor al acțiunii etilenei, fructe perisabile, coacere
Primit: 29 iunie 2015 Acceptat: 11 decembrie 2015
Cultivarea agrișei de pelerină (Physalis peruviana L.), este o alternativă de producție pentru economia multor țări, deoarece prezintă perspective și interese bune pe piețele internaționale, care derivă din caracteristicile nutriționale și proprietățile medicinale ale fructului (Gastelum, 2012), care i-a permis să să fie inclus în lista așa-numiților ? superfruiți ? (Superfruit, 2011; Fischer și colab., 2011). Pentru anul 2013, Columbia a prezentat o producție de 12.873 t, pe o suprafață de 880 ha, cu un randament de 14,6 t · ha -1 (Agronet, 2014). Ecotipul columbian s-a remarcat pe piața mondială pentru aroma sa dulce, aroma și culoarea strălucitoare caracteristică (Galvis și colab., 2005), care sunt comercializate pe piețele naționale și, de asemenea, sunt exportate în America de Nord și Europa (Fischer și colab., 2011 ).
S-a constatat că 1-MCP scade producția de etilenă (Choi și colab., 2008; Cerqueira și colab., 2009; Zhang și colab., 2012) deoarece afectează sinteza sa autocatalitică prin reducerea expresiei genelor care codifică pentru sintaza ACC. și enzimele ACC oxidază (Zhang și colab., 2012; Yang și colab., 2013). La rândul său, 1-MCP afectează, de asemenea, semnalizarea etilenei, deoarece scade expresia genelor care codifică receptorii de etilenă (Yang și colab., 2013). 1-MCP poate întârzia pierderea fermității (Choi și colab., 2008; Villalobos și colab., 2011). De asemenea, s-a raportat că 1-MCP poate reduce conținutul de zaharuri și degradarea acizilor organici în diferite fructe (Singh și Pal, 2008; Zhang și colab., 2009; Deaquiz și colab., 2014).
Concentrația de 1-MCP necesară pentru a bloca acțiunea etilenei variază în funcție de specie, cultivar, starea de maturare, capacitatea de producere a unor noi receptori, timpul și temperatura de expunere (Watkins, 2006). Dozele optime variază între specii, dar Blankenship și Dole (2003) raportează concentrații și temperaturi diferite pentru aplicarea 1-MCP, care sunt între 0,1 și 100 µL·L -1 la 20-25 ° C timp de 6 la 24 de ore. Cu toate acestea, concentrația recomandată pentru produsele de uz comercial (EthylBloc și SmartFresh) este între 100 și 500 µL·L -1, de aproximativ 1000 de ori mai mare, probabil datorită posibilității ridicate de pierderi de 1-MCP (Serek și colab., 2006) . Pentru a prelungi durata de viață utilă a fructelor de coacăză, obiectivul acestei cercetări a fost de a evalua comportamentul lor după recoltare la diferite doze și timpi de expunere la 1-metilciclopropenă.
Materiale și metode
Pentru acest studiu, fructele de coacăz ecotip Columbia au fost utilizate în maturarea de gradul 3 conform Icontec 4580 (Icontec, 1999) pe baza culorii, complet sănătoase și cu dimensiuni omogene, ale căror caracteristici fizico-chimice, măsurate la începutul experimentului în laborator, au fost indicele de culoare (CI) = 0,58 ± 0,2; solidele solubile totale (SST) = 14,15 ± 0,3 ºBrix; aciditate totală titrabilă (ATT) = 2,98 ± 0,1%. Fructele au fost recoltate într-o cultură comercială din municipiul Ventaquemada (departamentul Boyacá, Columbia). Experimentul și analizele au fost efectuate în laboratorul postrecoltare al Facultății de Științe Agrare a Universității Naționale din Columbia, sediul Bogotá.
S-a folosit un design experimental complet randomizat, cu un aranjament factorial de 3x3 + 1 tratamente, unde primul factor a fost dozele de 1-MCP (0,3, 1 și 3 µL·L -1), iar al doilea factor a corespuns timpului de tratament cu 1-MCP (2, 12 și 24 h), plus un control absolut; cele 10 tratamente au avut 4 repetări și cele 40 UE au fost alcătuite din 125 g de fructe ambalate în cutii de plastic de polietilen tereftalat (PET). Fructele au fost lăsate la temperatura camerei (16 ° C) și umiditate relativă de 70% timp de 15 zile.
S-au făcut măsurători săptămânale ale indicelui de culoare (IC = 1000 xa */L * xb *), calculate din parametrii sistemului CIELab L *, a * și b *, pentru care s-au făcut trei citiri de culoare în zona ecuatorială a fiecărui fruct cu un Minolta Colorimetru digital CR 410; fermitatea fructelor (N): prin utilizarea unui texturometru digital (Lloyd LS1,) cu o celulă de încărcare de 1 KN, perforator cilindric de 3 mm și program Nexygen plus; scădere în greutate (%) = ((P1-P2)/P1) x100, unde P1 = greutatea fructelor la momentul inițial și P2 = greutatea fructelor la momentul final; Solidele solubile totale (SST) au fost obținute prin măsurători ale gradului Brix cu un refractometru digital (Hanna) cu un interval de la 0 la 85% cu o precizie de 0,1 ° Brix; Aciditatea totală titrabilă (ATT) a fost determinată cu titrator automat Metrohm 916 Food Ti-Touch 120.
Pentru producția de etilenă (µL C2H4 kg -1 · h -1) Aproximativ 100 g de fructe de coacăz au fost cântărite și plasate în camere de sticlă ermetice de 500 cm 3 timp de 1 oră, după care s-a extras o probă de 0,3 mL de gaz care a fost apoi injectată în cromatograful cu gaz (CG) Agilent Technologies 7890A (Agilent Technologies, Santa Clara, CA) , echipat cu un detector de ionizare cu flacără (FID). A fost utilizată o coloană HP-PLOT (30 m x 0,55 mm x 40 um). Condițiile cromatografice au fost următoarele: temperatura injectorului de 70 ° C, temperatura cuptorului de 50 ° C și temperatura detectorului FID de 250 ° C Heliul a fost utilizat ca gaz de antrenare la un debit de 7,0 mL · min -1 și gazele de ardere ale detectorului FID erau aer uscat și hidrogen cu debituri de 300 și respectiv 40 mL · min -1. Pentru cuantificare, a fost realizată o curbă de calibrare cu un etilen standard (AGA, Bogotá). În cele din urmă, s-a cuantificat concentrația internă de etilenă (CIE), pentru care s-a prelevat 1 ml de probă din interiorul fructelor și s-a injectat imediat în cromatograful gazos. Producția de etilenă a fost măsurată la fiecare două zile.